Влияние криотерапии на изменение биохимических показателей периферической крови
ВВЕДЕНИЕ
Чудесное воздействие холода на организм известно давно. Криотерапия (КТ) со времен Гиппократа и Авиценны известна как результативный метод уменьшения выраженности боли и воспалительных реакций. Упоминание о лечебных эффектах холода встречается и в более ранних источниках, и в более поздних (в трудах Цельсия, Галена, Бартолини, Самойловича, Ларрея, Эдварса, Воллермира и некоторых других). Врачеватели разных народов на протяжении многих веков использовали целебные свойства холода для закаливания, лечения различных недугов, восстановления бодрости духа. Изучение целебных свойств холода легло в основу нового направления - криотерапии, основанной на использовании действия сверхнизких температур на систему терморегуляции человека. Проще говоря, криотерапия - это лечение холодом. КТ не устаревает и развивается быстрыми темпами. По-видимому, это связано с удовлетворительной клинической эффективностью, относительной безвредностью и отсутствием значительных материальных затрат при использовании большинства методов КТ [1].
Цель работы – проанализировать изменения основных биохимических показателей крови доноров после курса процедур криотерапии.
Задачи работы:
– изучить изменения ионного состава плазмы крови доноров после криотерапии;
– исследовать модификацию кислотно-основного состояния и газов крови до и после криотерапии;
– проанализировать уровень гематокрита, гемоглобина и глюкозы в плазме крови после криотерапии.
ОГЛАВЛЕНИЕ
ПЕРЕЧЕНЬ СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ 7
ВВЕДЕНИЕ 8
ГЛАВА 1 КРИОТЕРАПИЯ: ОСНОВНЫЕ МЕХАНИЗМЫ ВОЗДЕЙСТВИЯ 9
1.1 Общая характеристика криотерапии 9
1.2 Влияние криотерапии на клеточные и тканевые структуры 11
1.3 Влияние криотерапии на нейроэндокринную систему 11
1.4 Влияние криотерапии на сердечно - сосудистую систему 12
1.5 Влияние криотерапии на нервно-мышечный аппарат 13
1.6 Влияние криотерапии на воспаление и иммунологические реакции 14
ГЛАВА 2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 16
2.1 Объект исследования 16
2.2 Методы исследования 18
2.2.1 Анализ ионного состава плазмы крови 18
2.2.2 Методики исследования кислотно-основного состояния и газов крови (рН, рСО2, рО2) 20
2.2.3 Методики исследования гематокрита (Hct), гемоглобина (Hb) 21
2.2.4 Методика исследования глюкозы (Glu) 23
2.2.5 Методика исследования оснований во внеклеточной жидкости и оснований в крови (BEecf, Beb) 24
2.2.6 Методики исследования стандартного бикарбоната и содержание бикарбоната (SBC, HCO3-) 24
2.2.7 Методики исследования общей концентрации углекислого газа 25
2.2.8 Методики исследования ионизированного кальция (nCa++) 26
2.2.9 Методика исследования индекса циркуляторного сопротивления 27
2.2.10 Методика исследования насыщения гемоглобином на 50% (P50) 27
2.2.11 Методики исследования O2Cap, O2Ct 28
2.3 Статистическая обработка результатов исследования …………..............29
ГЛАВА 3 РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЯ 31
3.1 Исследование модификации кислотно-основного состояния и газов крови до и после криотерапии 31
3.2 Анализ уровня гематокрита, гемоглобина и глюкозы в плазме крови . 35
3.3 Анализ изменений ионного состава плазмы крови доноров после криотерапии 37
3.4 Анализ уровня оснований во внеклеточной жидкости и оснований в крови (BEecf, Beb) 39
3.5 Анализ изменений стандартного бикарбоната и концентрации бикарбоната (SBC, HCO3-) доноров после криотерапии 40
3.6 Анализ уровня TCO2 общей концентрации двуокиси углерода в плазме крови до и после криотерапии . 42
3.7 Анализ изменения ионизированного кальция (nCa++) доноров до и после криотерапии 43
3.8 Анализ изменений индекса циркуляторного сопротивления (RI) . 44
3.9 Анализ изменений уровня насыщения гемоглобином на 50% (P50) доноров после криотерапии 45
3.10 Анализ изменений кислородной емкости в крови и общего содержания кислорода (O2Cap, O2Ct) доноров после криотерапии . 46
Список литературы не найден
Количество глюкозы можно определить как в цельной крови, так и в плазме, и в сыворотке крови вследствие ее равномерного распределения между плазмой и форменными элементами. Подготовка к исследованию: натощак, не менее чем через 8 ч после последнего приема пищи. Желательно брать кровь в утренние часы. Необходимо исключить повышенные психо-эмоциональные и физические нагрузки. Глюкоза во взятой пробе крови продолжает потребляться клетками крови (эритроцитами, лейкоцитами - особенно при высоком количестве лейкоцитов). Поэтому необходимо отделить плазму (сыворотку) от клеток не позже чем через 2 часа после взятия пробы или использовать пробирки с ингибиторами гликолиза. При несоблюдении этих условий могут наблюдаться ложно заниженные результаты.
Для определения глюкозы крови используют три группы методов:
•ферментативные, из которых наибольшее распространение получил глюкозооксидазный метод;
•редуктометрический метод, основанный на способности глюкозы восстанавливать соли меди или нитробензола;
•метод, основанный на цветной реакции с продуктами, образующимися при нагревании углеводов с толуидином.
Глюкозооксидазный метод – метод определения содержания глюкозы в крови и моче, основанный на реакции ее окисления в присутствии фермента глюкозооксидазы с образованием перекиси водорода, которая в свою очередь в присутствии пероксидазы окисляет ортотолидин с образованием окрашенных продуктов; расчет концентрации глюкозы в крови проводят фотометрически, сравнивая интенсивность окраски с калибровочным графиком.